河豚毒素定量酶聯(lián)免疫檢測試劑盒
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本測試盒用直接競爭免疫分析法定量測定河豚魚中的河豚毒素（TTX）。該測試盒反應孔可拆卸，可測單份樣品，也可測多份樣品。定量分析時需有含450nm波長的微孔板酶標儀。
- 產品描述
本測試盒用直接競爭免疫分析法定量測定河豚魚中的河豚毒素（TTX）。該測試盒反應孔可拆卸，可測單份樣品，也可測多份樣品。定量分析時需有含450nm波長的微孔板酶標儀。
1 概要
河豚魚是近海底棲居的肉食性有毒海產魚類，其內臟有毒。其毒性物質主要是河豚毒素，河豚毒素是一種劇烈的神經毒素，其性質穩(wěn)定，加熱、鹽腌及高溫烹煮均不能使其破壞，其毒性比晴化鈉大1000倍。因誤食或食用加工不當?shù)暮与圄~而發(fā)生人畜中毒的事件每年都有發(fā)生。故準確檢測河豚魚中的河豚毒素對預防和控制河豚毒素中毒，具有重要意義。本檢測方法具有靈敏、快速、簡便、特異性好、取樣量小、不破壞魚體結構，并可同時檢測大量樣品等優(yōu)點。
2 測定原理
本測試盒利用固相酶聯(lián)免疫吸附原理，采用直接競爭ELISA法進行測定。用抗原包被微孔板，加入河豚毒素標準品或樣品、抗河豚毒素酶標單克隆抗體進行免疫反應后，加入底物顯色，終止液終止后，用酶標儀在450nm處測定OD值。
3 提供的物品
微孔板
5個濃度的TTX標準溶液（各1mL）
標準1：0ng/mL …………………………………………………………直接使用
標準2：5.0ng/mL ……………………………………………………………直接使用
標準3：20.0ng/mL …………………………………………………直接使用
標準4：50.0ng/mL …………………………………………………直接使用
標準5：200.0ng/mL …………………………………………………直接使用
抗TTX抗體溶液（6mL） …………………………………………………直接使用
顯色液（12mL） ……………………………………………………………直接使用
終止液（6mL） ………………………………………………………………………直接使用
濃縮洗液（30mL） …………………………………………………………………稀釋使用
4 盒中未提供，需自備物品
微孔板酶標儀（含450nm）、振蕩器、粉碎機、微量移液器
量筒、漏斗、容量瓶、快速定性濾紙
乙酸、甲醇（分析純）、去離子水或蒸餾水
5 操作者注意事項
標準溶液中含有TTX毒素，應特別小心。
終止液為1N硫酸，避免接觸皮膚。
每次加樣后立即將所有試劑放回2~8 ℃。
每步加樣時間應控制在5min內。
孵育過程中應避光。
不要使用過期試劑盒。
不要交叉使用不同批號的試劑盒中的試劑。
6 儲存條件
保存試劑盒于2~8℃。不要冷凍
顯色液對光敏感，因此要避免直接暴露在光線下。
將不用的微孔板放進原鋁箔袋中，置2~8℃保存。
7 試劑變質的標志
標準1的吸光度值小于0.5個單位（A450nm<0.5）時，表示試劑可能變質。
8 樣品處理
----樣品應當保存在陰涼避光之處及冷藏保存；
----稱取5g河豚魚樣品（肌肉、皮或內臟），剪碎，組織勻漿器打碎，加入25mL 0.1%的乙酸，在電爐上煮沸攪拌10min。
----待冷卻至室溫后，3000rpm離心10min。
----上清用快速定性濾紙過濾于125mL分液漏斗中。
----沉淀加入20mL0.1% 乙酸，再煮沸3min，重復步驟3~4。
----加入等體積乙迷脫脂，靜置分層，放出水層至另一分液漏斗中，再重復脫脂1次。
----將水層放入50mL量筒中，用0.1%乙酸定容至40mL，4℃保存?zhèn)溆谩?/p>
----測定時取1mL提取液，用1mol/L氫氧化鈉調節(jié)pH至6.5-7.0，立即用于檢測。
9 酶免疫分析程序
----濃縮洗液為10倍濃縮液，使用時與去離子水或蒸餾水按體積比1:9稀釋后使用。
----取所需數(shù)量的板條插入微孔架，記錄樣品及標準的位置。
----加入50mL標準品或處理好的樣品到微孔，每個標準和樣品必須使用新的吸頭。
----加入50mL抗TTX抗體溶液到每個微孔（注意移液器管尖不要接觸到孔中的液體，避免交叉污染）中，37℃孵育90min。
----甩掉孔中液體，用洗液洗滌微孔板3min×3次，zui后一次應在吸水紙上拍打以*除去孔中液體。
----每孔加入顯色液100mL（2滴），37℃孵育10min。
----每孔加入終止液50mL（1滴），立即用酶標儀在波長450nm處測定吸光度值（OD值）。
10 樣品濃度計算
以標準溶液OD值與標準1OD值的比值為縱坐標，所對應標準溶液濃度（ng/mL）的對數(shù)值為橫坐標，制作校正曲線。根據樣品OD值與標準1OD的比值，可從曲線上得到對應點的橫坐標，即為TTX濃度的對數(shù)值，求得反對數(shù)即為測定液中TTX濃度C（ng/mL），按下列公式計算出樣品中TTX含量：
TTX含量（mg/kg）= C×K
式中：C：稀釋后樣品提取液中TTX含量（ng/mL）
K：樣品稀釋倍數(shù)（本提取方法為8）
11 主要技術指標及參數(shù)
11.1 zui低檢出濃度5.0 ng/mL。
11.2 加標回收率在70-120%，條內變異系數(shù)＜10%，條件變異系數(shù)＜15%。
11.3 線性范圍：5.0~200.0ng/ml。
附圖（僅供參考）
TTX濃度（ng/mL）對數(shù)值
TTX校正曲線
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